Terjemahan : Racun Alga di Kolam Budidaya Ikan

Racun alga dapat menyebabkan masalah dalam budidaya air tawar dari kedua vertebrata (ikan) dan invertebrata (kerang). Masalah tersebut meliputi:

• Toksisitas tidak langsung melalui perubahan kualitas air (SRAC publikasi tion No. 466), atau
• Toksisitas langsung.

Racun alga adalah molekul organik yang diproduksi oleh berbagai ganggang di laut, air payau dan air tawar, serta pada tanah basah (Falconer, 1993). Racun alga menjadi masalah dalam budidaya perikanan ketika mereka diproduksi dalam jumlah yang cukup, dengan potensi yang cukup untuk membunuh organisme budidaya perikanan, menurunkan tingkat makan dan pertumbuhan, menyebabkan masalah keamanan pangan, atau berpengaruh buruk pada kualitas produk (Shumway, 1990).

Blooming Alga

Produksi racun alga secara normal berhubungan dengan blooming alga, atau pertumbuhan yang cepat dan pengecualian dari akumulasi padat alga. Istilah Bloom Alga Berbahaya / Harmful Algal Bloom (HAB) digunakan untuk menggambarkan proliferasi alga, atau fitoplankton. Beberapa Bloom dari adanya alga tidak beracun dapat juga menjadi bencana bagi hewan budidaya, karena bloom alga akan menguras oksigen di perairan dangkal pada banyak sistem akuakultur. Jumlah HABs sekitar dunia meningkat (Shumway, 1990; Sunda et al., 2006), terutama di Amerika Serikat di mana hampir setiap negara pesisir kini terancam, dalam beberapa kasus lebih dari satu spesies alga berbahaya. Para ilmuwan tidak yakin mengapa tren ini terjadi. Penyebab mungkin dari  alam (penyebaran  spesies) atau ulah manusia terkait (pengayaan nutrisi, perubahan iklim, dan / atau transportasi alga dari air ballast kapal) (JohnK, et al 2008;. Sunda et al, 2006.).

Efek dari  ganggang bervariasi cakupannya. Beberapa ganggang beracun hanya pada kepadatan yang sangat tinggi, sementara yang lain dapat menjadi racun pada kepadatan sangat rendah (beberapa sel per liter). Beberapa bloomr menghitamkan air (sehingga istilah "pasang merah" dan "pasang cokelat"), sementara yang lain hampir tidak terdeteksi dengan pengamatan kasual (Shumway, 1990).

HABs dapat mempengaruhi kesehatan masyarakat dan  ekosistem ketika :

Kerang penyaring makanan (clams, mussels, oysters, scallops) memakan fitoplankton beracun dan racun berbahaya terakumulasi yang melewati rantai makanan; Ikan, kerang, burung dan bahkan mamalia terbunuh dengan makan organisme yang telah mengkonsumsi racun alga; Cahaya tidak bisa menembus air, sehingga mengubah fungsi dan struktur ekosistem perairan; Perubahan warna air;  Pembusukan biomassa bloom alga menghabiskannya oksigen terlarut (lebih khusus sangat kritis dalam budidaya); atau Bloom alga membunuh alga penting lainnya dalam jaring makanan (Codd et al., 2005b; Landsburg, 2002).

HABs dapat menyebabkan kerugian ekonomi yang serius dalam budidaya jika mereka membunuh organisme budidaya atau menyebabkan kekhawatiran konsumen tentang keamanan pangan. Perkiraan awal menunjukkan bahwa efek dari wabah HAB pada ekonomi AS lebih dari $ 40 juta per tahun, atau $ 1 miliar per dekade (Landsburg, 2002; Hudnell, 2008).

Racun yang dihasilkan alga dapat menjadi lebih umum di masa depan (Sunda et al, 2006;.. JohnK et al, 2008), terutama yang berawal di sistem air tawar eutrofik. Publikasi ini berfokus pada racun alga di kolam budidaya air tawar di Selatan dan tenggara Amerika Serikat. Toksin paling umum yang dihasilkan alga di wilayah ini adalah cyanobacteria, alga emas (Prymnesium parvum) dan Euglenoid.

Cyanobacteria : Alga biru-hijau

Cyanobacteria (alga biru-hijau) hidup di air tawar, payau, laut dan perairan persaline hidrokarbon, serta lingkungan darat. Cyanobacteria berkembang di banyak habitat dari mata air panas sampai di Arktik. Mereka memainkan peran penting dalam rantai elemen dan struktur biogeokimia, fungsi dan keanekaragaman hayati dari komunitas perairan (dari mikroba melalui vertebrata). Beberapa cyanobacteria dapat mengurangi N2 dan CO2. Beberapa dapat mengkonversi N2 menjadi NH3 dan, pada akhirnya, menjadi asam amino dan protein.

Cyanobacteria relatif memilik struktur prokariotik yang sederhana dan sedikit membran-terikat organel (nukleus, mitokondria dan kloroplas). Dengan murien di dinding sel dan reproduksi dengan pembelahan biner, cyanobacteria secara struktural dan fisiologis seperti bakteri gram negatif lainnya, tetapi mereka melakukan fotosintesis seperti tanaman dalam sistem air. Cyanobacter- jauh lebih besar daripada bakteri lain dan membuat kontribusi besar untuk dunia fotosintesis dan fiksasi nitrogen (Codd et al, 2005a;. Huisman et al, 2005;. Hudnell, 2008).

Cyanobacteria terjadi dalam bentuk uniseluler, kolonial dan filamen dan sebagian besar tertutup dalam sarung mucilagenous, baik secara individu maupun kolonial. Sebagai sel tunggal, koloni besar dan filamen (trikoma), alga biru-hijau dapat menjadi alga yang dominan di perairan yang kaya nutrisi. Mereka dapat membentuk bloom yang tampak begitu tipis dan terlihat warna biru hijau menutupi permukaan air.

Beberapa spesies yang ditemukan di Selatan dan Tenggara menghasilkan zat yang menyebabkan perubahan rasa dan bau di air dan produk- produk akuakultur (Tucker, 2000). Beberapa alga biru-hijau, khususnya Anabaena dan Microcystis, menghasilkan racun-racun bagi ikan dan satwa liar dan ternak yang meminum air ang terkontaminasi. Ada juga kasus yang terdokumentasi dari racun alga biru-hijau yang merugikan manusia di bagian lain dunia yang minum air sehat.

Ekologi cyanobacterial di kolam

Cyanobacteria dapat berkoloni dan tumbuh dengan cepat menjadi massa yang besar di kolam budidaya. Faktor-faktor yang mempengaruhi pertumbuhan mereka adalah status nutrien, salinitas atau kekuatan ion, kondisi cahaya, turbulensi dan pencampuran, suhu dan herbivora (Sunda et al., 2006). Dalam situasi budidaya, ganggang eukariotik (hijau, diatom, dll) sering dapat tumbuh lebih cepat dari cyanobacteria. Bagaimanapun, cyanobacteria dapat bersaing dengan ganggang untuk memperoleh nutrisi, berkembang dengan oksigen terlarut rendah, dan fotosintesis lebih efisien pada tingkat cahaya rendah. Cyanobacteria tidak begitu terpengaruh oleh kekeruhan, konsentrasi amonia yang tinggi  dan suhu yang hangat. Mereka bisa mengambil keuntungan dalam situasi budidaya eutrofik. Cyanobacter dapat mempengaruhi produksi zooplankton dan juga produksi ikan. Mereka juga memproduksi allelochemicals yang dapat menghambat persaingan alga dan invertebrata pemakan tanaman (Gross, 2003;. Berry et al, 2008).

Ada bukti kuat bahwa cyanobacteria dan racun mereka (baik neurotoksin dan hepatotoxins) yang mempengaruhi zooplankton (cladocerans dan rotifera) struktur populasi, dan bahwa hal ini dapat mempengaruhi proses ekologi yang bertanggung jawab pada keberhasilan Cyanobacter (Berry et al., 2008). Zooplankton umumnya menghindari Cyanobacteri sebagai sumber makanan (Gross, 2003), yang berarti bahwa pakan zooplankton pada alga bersaing dengan cyanobacteria. Dalam prosesnya, mereka melepaskan nutrisi penting, kemudian memupuk pertumbuhan cyanobacter. Selama blooming cyanobacterial, ketika sumber makanan alternatif untuk zooplankton telah habis, populasi Daphnia bisa menurun. Beberapa spesies zooplankton (Daphnia pulicaria, Daphnia pulex) telah beradaptasi untuk bertahan hidup dari sel beracun tertentu (Sunda et al, 2006;. Gross, 2003). Ini mengubah dinamika populasi zooplankton. Tekanan feeding oleh zooplankton yang telah beradaptasi pada cyanobacter dikurangi karena predasi ikan, yang lagi-lagi melepaskan nutrisi yang mendukung pertumbuhan cyanobacter. Mungkin terlalu dini untuk mengusulkan bahwa dominasi cyanobacter ditunjukan oleh produksi sianotoksin. Namun, pencegahan makan merupakan salah satu petunjuk yang disarankan untuk metabolime ini (Berry et al., 2008). Apakah senyawa yang menyebabkan keracunan dan penolakan adalah satu yang baru-baru ini dipertanyakan (Berry et al., 2008). Sementara daphnia mati ketika makan di sel Microcystis beracun, mereka tidak menunjukkan penyeleksian untuk  menelan sel beracun atau tidak beracun, yang menunjukkan bahwa microcystins tidak bertanggung jawab atas hambatan makan (Berry et al., 2008).

Masalah dengan cyanobacteria dalam kolam

Cyanobacter dapat dengan cepat mengambil alih  sebuah kolam budidaya dan berkontribusi pada kondisi yang tidak stabil. Bloom cyanobacteria  dapat menurunkan produksi ikan dan membunuh ikan karena penurunan oksigen. Cyanobacteria juga dapat menyebabkan mati rasa dan bau pada ikan.

Namun, peran cyanobacteria dan cyanotoxin dalam kasus matinya ikan dan masalah lain- tidak jelas hingga saat ini. Ada lebih dari 1 juta kolam ikan di Tenggara dan banyak dari mereka memiliki bloom yang secara relatif sering muncul bloom cyanobacter yang dapat menghasilkan racun (misalnya, Microcystis, Anabaena, dll). Namun hanya ada beberapa laporan matinya ikan yang terkait langsung karena produksi toksin alga (Zimba et al., 2001). Jadi adanya alga penghasil alga racun tidak cukup berarti toksin yang diproduksi dapat menyakiti ikan dalam budaya.

Racun cyanobacterial

Racun Cyanobacterial dapat diklasifikasikan menjadi  beberapa cara. Mereka dapat diklasifikasikan menurut struktur kimianya sebagai peptida siklik (crocystin mi- dan nodularin), alkaloid (anatoxin-a, anatoxin-a(s), saxitoxin, cylindrospermopsin, aplysiatoxins, lyngbyatoxin-a) dan lipopolysaccharida. Namun, cyanotoxin lebih sering dibahas dalam hal toksisitas mereka pada hewan. Saat ini ada beberapa dermatotoxins (misalnya, byatoxin lyng- dan aplysiatoxins), yang diproduksi terutama oleh cyanobacteria bentik, sebagian cyanotoxin adalah juga neurotoksin atau hepatotoxins (Codd et al., 2005a).

Neurotoksin. Neurotoksin adalah molekul organik yang dapat menyerang sistem saraf vertebrata dan invertebrata. Tiga jenis utama neurotoksin telah diidentifikasi :

1) Adanya neurotoxin anatoxin-a, alkaloid, menghambat
transmisi di neuromuscular yang persimpangan dengan mimikri molekul neurotransmitter asetilkolin (blok depolarisasi pasca-sinaptik); 2) anatoxin-a(s) blok acetylcholin- esterase (mirip dengan pestisida organofosfat); 3) saxitoxins adalah alkaloid karbamat yang bertindak seperti karbamat pestisida dengan menghalangi saluran natrium.

Neurotoksin yang diproduksi oleh beberapa genera cyanobacteria termasuk Anabaena, Aphanizomenon, Microcystis, Planktothrix, Raphidiopsis, Arthrospira, Cylindrospermum, Phormidium dan Oscillatoria. Neurotoksin yang diproduksi oleh Anabaena spp., Oscillatoria spp. dan bloom Aphanizomenon flos-aquae bertanggung jawab atas temuan keracunan hewan di seluruh dunia (Carmichael, 1997; Briand et al., 2003).

Gambar 1. Microcyctis aeruginosa (Foto oleh John H. Rodgers, Jr.).

Neurotoksin biasanya memiliki efek akut pada vertebrata, dengan paralisis yang cepat dari tulang dan otot pernapasan perifer. Gejala lain termasuk kehilangan koordinasi, kram, gerakan insang tidak teratur, tremor, perubahan pola renang, dan kejang-kejang sebelum mati oleh pernapasan.

Hepatotoxins. Hepatotoxins diproduksi oleh banyak genera Cyanobacteria dan telah diimplikasikan dalam kematian ikan, burung, binatang liar, ternak dan manusia di seluruh dunia (Briand et al, 2003;. Carmichael, 1997). Para heptapeptides siklik, atau microcystins, menghambat eukariotik protein fosfatase jenis 1 dan tipe 2A, sehingga fosforilasi berlebihan elemen cytoskeletal dan akhirnya menyebabkan gagal hati (Codd, 2005b). Racun ini menargetkan hati dengan mengikat sistem transportasi anion organik di hepatocyte membran sel. Microcystins adalah kelompok terbesar cyanotoxin, dengan lebih dari 70 varian struktural (Malbrouk dan Kestemont, 2006). Microcystin adalah satu-satunya cyanotoxin yang jalur biosintesis dan cluster gen telah diidentifikasi (Huisman et al., 2005). Microcystin yang diproduksi di perairan segar dengan spesies Microcystis, Anabaena dan Planktothrix. Gejala keracunan pada ikan termasuk insang membesar karena kesulitan bernafas dan kelemahan atau ketidakmampuan untuk berenang. Ikan lele, Ictalurus punctatus, bisa menjadi terracuni di kisaran ~ 50 sampai 75 mg microcystin / L (Zimba et al., 2001). Semua ikan dapat mati dalam waktu 24 jam setelah terpapar. Pada nekropsi, lesi parah dapat diamati pada jaringan hati.

Satu hepatotoxin kuat, cylindrospermopsin, diproduksi oleh Cylindrospermopsis raciborskii, cyanobacterium relatif kecil. Cylindrospermopsin merupakan alkaloid yang menekan glutation dan sintesis protein. C. raciborskii telah ada di Selatan dan Tenggara selama beberapa dekade dan menjadi lebih luas. Mamalia (seperti sebagai manusia) yang relatif sensitif terhadap cylindrospermopsin dan mungkin akan terpengaruh ketika mereka makan ikan yang telah terkena racun. Sebuah studi melaporkan bioakumulasi cylindrospermopsin di jaringan otot dari lobster redclaw (Cherax quadricarinatus) dan jaringan visceral ikan pelangi (Oncorhynchus mykiss) menunjukkan bahwa paparan bisa terjadi dari air tawar makanan air tambak. Ikan umumnya lebih toleran terhadap racun alga dari mamalia dan cenderung untuk mengumpulkan mereka dari waktu ke waktu (Carson, 2000). Meskipun C. raciborskii belum menjadi masalah dalam budidaya, itu bisa menjadi masalah di masa depan.

Dampak lingkungan pada produksi toksin

Efek dari faktor lingkungan pada produksi toksin jauh dipelajari dan secara luas diperdebatkan (Codd, 2000; Codd et al, 2005a.). Blooming di badan air dapat beracun atau tidak beracun dari satu tahun ke tahun berikutnya. Komposisi galur yang berbeda (yaitu, beracun versus non-toksik), yang bisa- tidak dibedakan secara mikroskopis jika milik spesies yang sama, adalah penjelasan umum untuk kejadian ini. Namun, beberapa spesies dikenal menghasilkan racun tingkat tinggi atau rendah dalam kondisi laboratorium yang berbeda. Stimulus untuk produksi racun dalam spesies tersebut tidak diketahui.

Parameter lingkungan seperti intensitas cahaya, suhu, nutrisi dan jejak logam telah menirukan ke dalam kondisi laboratorium dan efeknya pada penelitian produksi cyanotoxin. Studi pada intensitas cahaya yang tidak pasti, tetapi diketahui bahwa cahaya yang kuat meningkatkan serapan besi di sel, yang mungkin bertanggung jawab pada produksi toksin. Namun, konsentrasi besi yang rendah meningkatkan konsentrasi microcystin (Huisman et al., 2005). Nutrisi seperti nitrogen dan fosfor sangat penting untuk pertumbuhan cyanobacterial. Fosfor biasanya menjadi faktor pembatas di kolam, peningkatan nutrisi dalam jumlah sangat kecil ini dapat mempengaruhi produksi toksin yang secara sederhana terlihat dengan meningkatnya pertumbuhan alga. Secara umum, jumlah microcystin (diproduksi oleh Anabaena, Microcystis dan Oscillatoria) dan anatoxin-a (diproduksi oleh Aphanizomenon) telah dilaporkan adalah di bawah  konsentrasi fosfor terendah yang diuji (Watanabe et al., 1995).

Mengelola Pemantauan cyanobacteria

Melihat dan mendiagnosa masalah. Sementara tidak semua bloom cyanobacteria yang memproduksi racun, menghasilkan racun, paling banyak di lakukan. Sekali bloom diamati, timbulnya toksisitas akan cepat (dalam beberapa jam untuk satu atau dua hari). Untuk mengkonfirmasi masalah, diagnosa akan membutuhkan sampel segar (belum diawetkan) dari yang berisi ikan yang diduga terpapar cyanobacteria (Rottmann et al., 1992). Contoh kedua ikan yang sakit dan mati juga akan diperlukan, bersama dengan informasi pada perilaku ikan dan gejala lain yang diamati. Ikan muda umumnya lebih sensitif dibandingkan ikan yang lebih tua. Diagnosa mungkin mencari lesi pada hati ikan, meskipun ini adalah tidak tersimpulkan sebagai sebagai metode diagnosis tunggal (Zimba et al., 2001).

Pengobatan. Sebagian besar waktu, mengelola kolam khusus untuk mencegah racun bloom alga biru-hijau sama sekali tidak dibenarkan, dan perawatan sendiri berisiko. Sebuah algicide tidak harus diterapkan tanpa mempertimbangkan ukuran kolam yang terkena, jumlah dan jenis ikan berisiko, usia dan kondisi pengoperasian ikan, sensitivitas pengobatan cyanobacterium, termasuk 1) pencampuran fisik dan aerasi, 2) meningkatkan laju aliran atau disiram untuk mengurangi  waktu retensi hidrolik, dan 3) penurunan atau altering kandungan gizi dan komposisi. Beberapa pilihan ini mungkin tidak layak di semua situs dan dalam segala situasi.

Prymnesiophytes: Alga Coklat Emas

The haptophyte genus Prymnesium terdiri terutama dari spesies penghasil racun yang membentuk bloom berbahaya biasanya di air payau (West et al., 2006). Bloom P. parvum telah bertanggung jawab pada matinya ikan dan kerugian ekonomi yang signifikan di Eropa, Amerika Utara dan benua lainnya. Texas telah terpukul dengan blooming berulang di beberapa waduk dan sungai dan Texas Parks and Wildlife telah menawarkan beberapa saran rinci mengenai opsi pengelolaan (Sager et al., 2007).

Ekologi Prymnesiophyte

Prymnesium parvum biasanya disebut alga "emas". Ini adalah dianggap menjadi protista haptophyte (Green dan Leadbetter, 1994). itu adalah relatif kecil (~ 10 m), umumnya organisme halofilik yang intermiten tently menghasilkan ichthyotoxin. Organisme ini telah terlibat  dalam berbagai kematian ikan yang luas di perairan payau dan perairan pedalaman dengan kandungan mineral yang relatif tinggi di lima benua (Otterstrom dan Steemann-Nielsen, 1940; Holdway et al, 1978;. James dan de la Cruz, 1989; Kaartvedt et al, 1991;.. Guo et al, 1996; Lindholm et al., 1999). Sel parvum P. mengandung klorofil a dan c serta pigmen aksesori kuning-coklat  dan mampu fotosintesis. Namun, organisme yang dianggap sebagai mixotroph yang dapat memakan bakteri dan protista (Skovgaard et al., 2003) dan phagotrophy telah diamati dalam kultur P. parvum harus memerlukan sebuah vitamin dalam kultur di laboratorium (Droop, 1954).

Racun Prymnesium

Prymnesium parvum menghasilkan setidaknya tiga racun ichthyotoxin (Ulitzer dan Shilo, 1966), sebuah cytotoxin (Ulitzer dan Shilo, 1970) dan hemolisin (protein yang melisiskan sel darah merah) (Ulitzer, 1973). Racun ini lebih dikenal sebagai prymnesins dan semua bisa mengubah membran sel permeable (Shilo, 1971). Kepadatan bloom tidak berkorelasi kuat dengan racun (Shilo, 1981), mungkin karena toksisitas dapat ditingkatkan dengan suhu lebih rendah dari 30 ºC (Shilo dan Aschner, 1953), pH lebih besar dari 7,0 dan konsentrasi fosfat (Shilo, 1971). P. parvum ichthyotoxin mempengaruhi hewan air yang bernapas dengan insang seperti ikan, berudu brachiated dan mollusks (Shilo, 1967). Hal ini menyebabkan sel-sel insang kehilangan permeabilitas selektif dan, dengan demikian, membuat mereka rentan terhadap racun dalam air (Ulitzer dan Shilo, 1966; Shilo, 1967).

Tanda-tanda keracunan

Pertumbuhan yang padat dari Prymnesium-parvum dapat mewarnai air menjadi warna kuning-coklat tembaga atau karat. Air dapat busa jika teraerasi atau teraduk. Mengakibatkan Ikan yang terkena berperilaku tak menentu. Mereka mungkin terakumulasi di air dangkal dan diamati berusaha melompat dari air untuk menghindar dari racun (Sarig, 1971). Ikan yang terkena mungkin terlihat insangnya berdarah, sirip dan sisik tertutupi lendir. Ikan muda sering paling sensitif terhadap toksin. Jika ikan dipindahkan ke air tidak tercemar pada tahap awal keracunan, insang mereka dapat pulih dalam beberapa jam (Shilo, 1967). Namun, tingkat makan dan pertumbuhan biasanya akan berkurang jika ikan bertahan hidup (Barkoh dan Fries, 2005). 

Serangga air, burung dan mamalia tidak terpengaruh oleh P. parvum racun. Alga emas tidak diketahui membahayakan manusia, meskipun ikan mati atau yang mau mati seharusnya tidak dimakan.

Mengelola prymnesiophytes

Pemantauan dan mendiagnosis masalah. Mengidentifikasi Prymnesium parvum memerlukan pemeriksaan yang tidak diawetkan, dari sampel air berlainan P. parvum dapat melewati banyak jaring plankton dan struktur mereka dapat diubah dan terdistorsi oleh pengawet atau fiksatif. Sel parvum P. dapat dideteksi pada konsentrasi rendah (~ 102 sel / mL) menggunakan mikroskop pada sampel hidup atau cukup segar. Kepadatan sel P. parvum dapat ditentukan dengan menggunakan hemacytometer (Barkoh dan Fries, 2005).

Prymnesium parvum N. Carter kecil, subspherical, sel berenang sekitar 8 sampai 15 µm panjang dengan dua sama atau subequal flagella heterodynamic 12 sampai 20 µm panjang dan pendek (3 sampai 5 µm), fleksibel, non-melingkar haptonema (Green et al., 1982). Sel memiliki dua kloroplas yang mungkin "berbentuk-C" dan warnanya hijau zaitun. Mereka berenang dengan gerakan maju halus sedangkan sel berputar pada sumbu longitudinal dan tiang flagellar. Sel parvum P. memiliki skala berkapur diagnostik yang dapat diamati dengan mikroskop elektron (Green et al., 1982). Pengalaman diperlukan untuk mengidentifikasi alga ini. West et al. (2006) telah mengembangkan antibodi monoklonal spesifik yang digunakan dalam hubungannya dengan fase padat   cytometry untuk cepat mengukur P. parvum.

Sebuah bioassay dapat digunakan untuk memperkirakan produksi ichthyotoxin oleh Prymnepotasium parvum (Sager et al., 2007). Uji ini berguna dalam memutuskan apakah akan menerapkan algicide. Pengujian melibatkan mengekspos ikan seperti larva promelas Pimephales ke air kolam sesuai petunjuk, dan pengenceran air diubah dengan kofaktor atau promotor P. parvum toksin. Ulitzer dan Shilo (1966) menemukan bahwa potensi P. parvum ichthyotoxin ditambah dengan kation DADPA (3,3-diaminodipropylamine) dalam tes laboratorium karena meningkatkan sensitivitas Gambusia untuk racun tersebut. Bioassay ini dapat mengidentifikasi perairan yang memiliki racun yang cukup (atau mengembangkan konsentrasi racun yang cukup) untuk menimbulkan risiko untuk ikan dalam budaya.

Untuk analisis diagnostik, sampel air 10 liter harus dikumpulkan setidaknya 6 inci di bawah permukaan karena P. parvum sensitif terhadap radiasi UV. Kedua jumlah sel (mikroskop) dan bioassay toksin diperlukan untuk mengkonfirmasi P. parvum, sampel air sehingga sebelum diawetkan harus dikirim engan ekspedisi ke laboratorium.

Pengobatan. Texas Parks dan Wild-life telah secara rinci menyarankan untuk mengelola Prymnesium parvum (Sager et al., 2007). Salah satu metode yang digunakan dalam budidaya kolam terisolasi menerapkan amonium sulfat dan tembaga sulfat (Barkoh et al., 2003). Konsentrasi amonium sulfat yang diperlukan untuk mengendalikan P. parvum (~ 0,17 mg / L amonia tidak ter-ionisasi) dapat menghasilkan konsentrasi am- monia tidak ter-ionisasi yang buruk mempengaruhi beberapa ikan (Barkoh et al., 2004). Jika tidak hati-hati digunakan, tembaga sulfat dapat membunuh alga yang diinginkan bersama dengan parvum P. dan mengurangi sumber makanan untuk zooplankton, sehingga mengganggu makan ikan. Baik jerami barley atau produk bakteri bioaugmentasi komersial adalah yang efektif untuk mengendalikan P. parvum di kolam Texas (Barkoh et al., 2008). Ekstrak jerami barley juga tidak efektif dalam uji laboratorium (Grover et al., 2007). Pengobatan dengan konsentrasi amonium tinggi (0,72 mg NH4-N / L) yang berhasil, meskipun mereka menimbulkan risiko bagi spesies non-target. Perlakuan berulang amonium klorida dan asam fosfat yang cukup berhasil untuk mengendalikan P. Parvum pertumbuhan limnocorrals di tambak (Kurten et al., 2007), tetapi mereka juga berbahaya bagi non-target species tersebut.

Dalam budidaya spesies ikan mas di Cina , padatan tersuspensi (lumpur), pupuk organik (pupuk kandang) dan penurunan salinitas telah digunakan untuk mengendalikan P. parvum (Guo et al., 1996), dengan hasil terbaik dari penurunan salinitas dan amonium sulfat. Bila menggunakan algicide, memperoleh semua persetujuan peraturan dan izin dan ikuti petunjuk label dan untuk mematuhi larangan hukum federal.

Euglenoid

Sejak tahun 1991, beberapa wabah beracun Euglena (Gbr. 3) telah terjadi di North Carolina hybrid striped bass (Morone saxatilis x M. Chrisops) kolam produksi, menyebabkan kerugian lebih dari 20.000 pon ikan.

Gambar 3. Euglena Sanguinea.

Penelitian yang relatif terbaru telah meyakinkan bahwa spesies Euglena menghasilkan ichthyotoxin di akuakultur (Zimba et al., 2004). Kematian ikan Bass hibrida bergaris di North Carolina disebabkan oleh E. Sanguinea, spesies yang terdistribusikan secara luas di banyak perairan dangkal, relatif tenang, sistem air tawar eutrofik. Spesies ini juga membunuh ikan lele, nila (Oreochromis niloticus) dan striped bass., yang dipelihara di laboratorium. Dalam penelitian yang meyakinkan, Zimba et al. (2004) mencatat bahwa budaya Euglena lata granuloma (UTEX LB2345) menyebabkan kematian dan gejala yang sama di channel nel lele dan ikan kecil sheepshead (Cyprinodon variegatus).

Diagnosa

Pemeriksaan mikroskopis dari air sampel dapat mengkonfirmasi kehadiran Euglena sejak E. Sanguinea adalah berbeda secara morfologis. Tipe perkembangan gejala dari paparan racun Euglena dimulai dengan ikan meninggalkan makanan tanpa alasan yang jelas. Dalam waktu 24 jam penghentian makan, ikan berenang di atau dekat permukaan dalam keadaan gelisah atau disorientasi, sering dengan sirip punggung keluar dari air atau berenang di sisi mereka dan bahkan terbalik. Jika langkah-langkah tidak diambil segera setelah mengamati gejala ini, dalam waktu 24 jam ikan akan mati.

Observasi lapangan ikan mati diindikasikan serangan cepat mematikan dengan jaringan insang kemerahan. Mortalitas ikan lele yang dibesarkan di laboratorium terjadi dalam 6,5 menit sampai 2 jam setelah paparan. Tidak karakteristik kualitatif air  (amonia, nitrat, pH, suhu atau oksigen terlarut) yang abnormal atau tidak biasa selama kematian ikan. Ikan terkena E. Sanguinea dalam budaya atau filtrat dari kultur disorientasi  dengan cepat. Respirasi mereka semakin cepat dan mereka kehilangan kemampuan untuk menjaga keseimbangan. Meskipun tidak ada pendarahan yang berbeda diamati, jaringan insang yang memerah (Zimba et al., 2004).

Text Asli : Hubungi Penulis

 

• Tweet
• Share
• Share
• Share
• Share